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15. Messung von Dopamin

Inhaltsverzeichnis

15. Messung von Dopamin

Die Messung von Dopamin in Bezug auf psychische Zusammenhänge ist aus verschiedenen Gründen weder diagnostisch noch zu Behandlungszwecken sinnvoll möglich.
Dopamin kann die Blut-Hirn-Schranke nicht überwinden.

15.1. Dopamin-Messungen in peripheren Körperflüssigkeiten oder zerebraler Rückenmarksflüssigkeit

Die Messungen der Konzentration von Dopamin und seiner Metaboliten (z.B. Homovanillinsäure, HVA) in peripheren Körperflüssigkeiten oder in der zerebralen Rückenmarksflüssigkeit (CSF) ist nicht empfindlich genug, um etwas über die Dopamin-Aktivität im Gehirn auszusagen.
Ein Vergleich der HVA-Konzentrationen in vier Hirnregionen (dorsaler frontaler Kortex, orbitaler frontaler Kortex, Nucleus caudatus und Putamen), Liquor und Blutplasma fand eine einzige signifikante Korrelation (zwischen Liquor und dorsalem frontalem Kortex), sodass Messungen der HVA-Konzentration im Rohplasma (selbst wenn Einflüsse durch Ernährung oder Narkose ausgeschlossen werden) für die Beurteilung des zentralen Dopaminstoffwechsels und -umsatzes kaum Nutzen zeigen.1

Periphere Dopaminwerte sagen weiter deshalb nur wenig über Gehirndopaminwerte aus, weil Dopamin nicht nur im Gehirn, sondern auch von verschiedenen peripheren Geweben synthetisiert und freigesetzt wird, z.B.:2

  • Bauchspeicheldrüse
  • Nebennierenmark
  • Niere
  • periphere Leukozyten.

Dies betrifft auch die Messung3

  • der Menge des Abbauenzyms MAO im Blut
  • der Prolaktin-Stressantwort

Schließlich benötigen dopaminerg vermittelte Einflüsse auf das Verhalten nicht zwingend eine Veränderung des Dopaminspiegels oder seiner Metaboliten. Sie können auch durch bloße Veränderungen der Rezeptoren oder der Dopaminflüsse entstehen.

15.2. Lidschlagrate als Anzeige von Dopaminspiegeländerungen

Die Lidschlagrate (Eyeblink)4

  • korreliert mit der Aktivität von DRD1 und DRD256
    • basale Lidschlagrate korreliert möglicherweise stärker mit DRD2
  • kann eine verringerte oder erhöhte Dopaminaktivität7 sowie die Normalisierung dieser Aktivität nach einer Behandlung anzeigen
    • insbesondere striatales Dopamin8
  • kann individuelle Unterschiede in der Leistung bei vielen kognitiven Aufgaben zuverlässig vorhersagen, insbesondere in Bezug auf belohnungsgesteuertes Verhalten und kognitive Flexibilität

Zwei Studien fanden keine Korrelation zwischen der Lidschlagrate und der Dopamin-Aktivität.910

15.3. Retina und erhöhtes extrazelluläres Dopamin

Anhand einer nicht-invasiven Analyse von Netzhautreaktionen auf Licht ließ sich ein erhöhter extrazellulärer Dopaminspiegel feststellen, der aus einem genetisch bedingten erhöhten DAT-Dopamin-Efflux entstand.11

15.4. Dopaminmessung im Labor

In vitro (an Gewebeproben) kann Dopamin auf verschiedene Weise gemessen werden:3

  • Messung der elektrischen Aktivität nachgeschalteter Neurone auf Stimulation dopaminerger Neurone
  • Messung der Feuerrate einzelner dopaminerger Neurone in Reaktion auf dopaminrelevante Stimuli
  • Messung der Auswirkung von Dopaminagonisten und Dopaminantagonisten
  • SPECT-Untersuchungen messen das Bindungsverhalten radioaktiv markierter Dopamin-Liganden; dies erlaubt eine indirekte Schlussfolgerung auf die Dopamin-Konzentration
    • die Dopaminfreisetzung kann mittels des Radioliganden [11C]-Racloprid anhand der Verringerung des D2R-Bindungspotenzials festgestellt werden
  • Bildgebungsstudien können Aktivität von dopaminergen Neuronen auf dopaminrelevante Stimuli darstellen

15.4.1. Elektrochemische Messmethoden

Zyklische Fast-Scan-Voltammetrie (FSCV)12

  • Messung der Veränderung der Dopaminfreisetzung
    • FSCV erfordert die Subtraktion eines Grundlinienstroms, daher nur zur Erfassung von Dopaminveränderungen geeignet
  • in vivo, in vitro
  • Kohlefaserelektrode wird in Gewebe eingeführt, und Dreieckswelle angelegt (-0,6 bis 1 V)
  • schnelle Abtastrate (> 400 V/s)
    • Abtastrate ist im Vergleich zur Geschwindigkeit der Exozytose relativ langsam
  • Erfassungsrate 10 bis 100 Hz
  • Verschiedene Verbindungen erzeugen während des Scans Oxidations- und Reduktionsströme bei unterschiedlichen Spannungen; Spitzenstrom für Dopamin bei ca. 0,6 V

Amperometrie12

  • Ähnlich wie FSCV, nutzt aber ein konstantes Potenzial (~0,6 V für Dopamin) an der Elektrode.
  • Hohe zeitliche Auflösung, nur durch Abtastrate begrenzt.
  • Begrenzte Spezifität für Dopamin. Daher nur nutzbar, wenn Dopamin die wichtigste elektroaktive Substanz ist.
  • Die Oxidation verbraucht Dopamin und kann damit zum Abklingen des Signals beitragen.

Mikrodialyse12

  • Messung des absoluten Dopaminspiegels
  • meist mit anschließender Hochleistungsflüssigkeitschromatographie
  • in vivo
  • Empfindlich genug zur Messung des basalen Dopaminspiegels im Gehirn lebender Tiere
  • Geringe zeitliche Auflösung, daher ungeeignet zur Messung schneller Dopamintransienten
  • Gewebeschädigung durch Sonde; kann Messungen beeinflussen

15.4.2. Messung ganzer Zellen

D2 IPSC-Aufzeichnung12

  • Zeigt die Aktivierung von DRD2 an.
    • übrige Dopaminfreisetzung wird nicht gemessen
  • Methode nutzt die GPCR-Signaltransduktion, die eine Verzögerung von ca. 50 bis 100 ms zwischen Dopaminfreisetzung und Detektion bewirkt.
  • GIRK (G-Protein-aktivierte, einwärts gerichtete Kaliumkanäle) erzeugen bei Aktivierung durch Dopamin einen hemmenden postsynaptischen Strom (IPSC), der gemessen werden kann.
  • In Mittelhirn-Dopamin-Neuronen sind DRD2 an GIRK gekoppelt
  • Im Striatum sind DRD2 nicht an GIRK gekoppelt. GIRKs können aber viral exprimiert werden, um D2-Aktivierung zu melden.

LGC-5312

  • dopaminempfindlicher Chloridkanal in C. elegans
  • Messung des Chloridstroms mit guter Empfindlichkeit und Spezifität für Dopamin

15.4.3. Bildgebende Verfahren

VMAT-pHluorin12

  • Messung der Fusion einzelner Vesikel aus einzelnen Varikositäten
  • VMAT-pHluorin ist ein pH-empfindlicher Fluorophor, der intraluminal an VMAT2 gebunden ist
  • Fusion von VMAT-pHluorin-markierten Vesikeln mit Plasmamembran erhöht Fluoreszenzsignal
  • Spezifität begrenzt; Ergebnis zeigt vesikuläre Freisetzung aller Neurotransmitter, die aus Dopamin-Neuronen freigesetzt werden

Fluoreszierende falsche Neurotransmitter (FFN)12

  • FFN sind VMAT2-Substrate, die selektiv in monoaminhaltige Vesikel geladen werden
  • Bei Freisetzung von Vesikeln verringert FFN-Diffusion die Fluoreszenz in den Varicositäten
  • Analyse einzelner Varikositäten
  • Empfindlichkeit ist begrenzt, da selbst bei starker Stimulation nur ein kleiner Teil der Vesikel eines Terminals freigesetzt wird

Genetisch kodierte Dopamin-Sensoren (dLight; GrabDA)12

  • Analyse von Dopamin-Rezeptoren
  • Durch Engineering von Dopamin-Rezeptoren gewonnene fluoreszierende Indikatoren
  • Markierung mit zirkulär permutiertem GFP
  • in vivo; in vitro
  • Hohe Empfindlichkeit
  • Hohe räumlich-zeitliche Auflösung

Nanoröhrchensensoren12

  • Untersuchung der räumlichen und zeitlichen Eigenschaften der Dopaminfreisetzung
  • einwandige Kohlenstoffnanoröhrchen
    • mit einzelsträngigen Oligonukleotiden konjugiert
    • im nahen Infrarotbereich fluoreszierend
  • in vivo; in vitro
  • direkte Einbringung in Gewebe
  • Starker Fluoreszenzanstieg nach Bindung an Dopamin
  • Schnelle Reaktion
  • sehr empfindlich
  • Spezifität begrenzt, da auch andere Katecholamine und Ascorbinsäure erkannt werden

15.4.4. Dopaminfreisetzung auf Flächenebene

  • Früher konnte Dopamin nur punktuell gemessen werden. Dies ermöglichte lediglich die Erfassung eines Mengenwertes an einer einzigen Stelle. Zwischenzeitlich wurden Methoden entwickelt, mit denen die Dopaminfreisetzung auf Flächenebene gemessen und aufgezeichnet werden kann. Eine Methode beschreibt die Beobachtung der Dopaminausschüttung ganzer Zellen,13 eine weitere die flächige Beobachtung der Dopaminausschüttung bis hinunter auf Dendritenebene.14
    Diese neuen Techniken ermöglichen erhebliche Erkenntnisgewinne.

15.5. DAT-Promotor-Methylierung im Blut könnte DAT-Expression im Striatum vorhersagen

Eine Messung der DAT-Promotor-Methylierung im Blut könnte möglicherweise als Indikator für die DAT-Expression im Striatum dienen.15


  1. Elsworth JD, Leahy DJ, Roth RH, Redmond DE Jr (1987): Homovanillic acid concentrations in brain, CSF and plasma as indicators of central dopamine function in primates. J Neural Transm. 1987;68(1-2):51-62. doi: 10.1007/BF01244639. PMID: 3806086.

  2. DiCarlo GE, Wallace MT. Modeling dopamine dysfunction in autism spectrum disorder: From invertebrates to vertebrates. Neurosci Biobehav Rev. 2022 Feb;133:104494. doi: 10.1016/j.neubiorev.2021.12.017. PMID: 34906613; PMCID: PMC8792250.

  3. Müller (2007): Dopamin und kognitive Handlungssteuerung: Flexibilität und Stabilität in einem Set-Shifting Paradigma. Dissertation

  4. Jongkees BJ, Colzato LS (2016): Spontaneous eye blink rate as predictor of dopamine-related cognitive function-A review. Neurosci Biobehav Rev. 2016 Dec;71:58-82. doi: 10.1016/j.neubiorev.2016.08.020. PMID: 27555290. REVIEW

  5. Demiral ŞB, Manza P, Biesecker E, Wiers C, Shokri-Kojori E, McPherson K, Dennis E, Johnson A, Tomasi D, Wang GJ, Volkow ND (2022): Striatal D1 and D2 receptor availability are selectively associated with eye-blink rates after methylphenidate treatment. Commun Biol. 2022 Sep 26;5(1):1015. doi: 10.1038/s42003-022-03979-5. PMID: 36163254; PMCID: PMC9513088.

  6. Elsworth JD, Lawrence MS, Roth RH, Taylor JR, Mailman RB, Nichols DE, Lewis MH, Redmond DE Jr (1991): D1 and D2 dopamine receptors independently regulate spontaneous blink rate in the vervet monkey. J Pharmacol Exp Ther. 1991 Nov;259(2):595-600. PMID: 1682479.

  7. Chen EY, Lam LC, Chen RY, Nguyen DG (1996): Blink rate, neurocognitive impairments, and symptoms in schizophrenia. Biol Psychiatry. 1996 Oct 1;40(7):597-603. doi: 10.1016/0006-3223(95)00482-3. PMID: 8886292.

  8. Sadibolova R, Monaldi L, Terhune DB (2022): A proxy measure of striatal dopamine predicts individual differences in temporal precision. Psychon Bull Rev. 2022 Aug;29(4):1307-1316. doi: 10.3758/s13423-022-02077-1. PMID: 35318580; PMCID: PMC9436857.

  9. van den Bosch R, Hezemans FH, Määttä JI, Hofmans L, Papadopetraki D, Verkes RJ, Marquand AF, Booij J, Cools R (2023): Evidence for absence of links between striatal dopamine synthesis capacity and working memory capacity, spontaneous eye-blink rate, and trait impulsivity. Elife. 2023 Apr 21;12:e83161. doi: 10.7554/eLife.83161. PMID: 37083626; PMCID: PMC10162803.

  10. van der Post J, de Waal PP, de Kam ML, Cohen AF, van Gerven JM (2004): No evidence of the usefulness of eye blinking as a marker for central dopaminergic activity. J Psychopharmacol. 2004 Mar;18(1):109-14. doi: 10.1177/0269881104042832. PMID: 15107193.

  11. Dai H, Jackson CR, Davis GL, Blakely RD, McMahon DG (2017): Is dopamine transporter-mediated dopaminergic signaling in the retina a noninvasive biomarker for attention-deficit/ hyperactivity disorder? A study in a novel dopamine transporter variant Val559 transgenic mouse model. J Neurodev Disord. 2017 Dec 28;9(1):38. doi: 10.1186/s11689-017-9215-8. PMID: 29281965; PMCID: PMC5745861.

  12. Liu C, Kaeser PS (2019): Mechanisms and regulation of dopamine release. Curr Opin Neurobiol. 2019 Aug;57:46-53. doi: 10.1016/j.conb.2019.01.001. PMID: 30769276; PMCID: PMC6629510. REVIEW

  13. Zeng S, Wang S, Xie X, Yang SH, Fan JH, Nie Z, Huang Y, Wang HH. Live-Cell Imaging of Neurotransmitter Release with a Cell-Surface-Anchored DNA-Nanoprism Fluorescent Sensor. Anal Chem. 2020 Nov 17;92(22):15194-15201. doi: 10.1021/acs.analchem.0c03764. PMID: 33136382.

  14. Bulumulla, Krasley, Cristofori-Armstrong, Valinsky, Walpita, Ackerman, Clapham, Beyene (2022): Visualizing synaptic dopamine efflux with a 2D composite nanofilm. Elife. 2022 Jul 4;11:e78773. doi: 10.7554/eLife.78773. PMID: 35786443; PMCID: PMC9363124.

  15. Wiers CE, Lohoff FW, Lee J, Muench C, Freeman C, Zehra A, Marenco S, Lipska BK, Auluck PK, Feng N, Sun H, Goldman D, Swanson JM, Wang GJ, Volkow ND (2018): Methylation of the dopamine transporter gene in blood is associated with striatal dopamine transporter availability in ADHD: A preliminary study. Eur J Neurosci. 2018 Aug;48(3):1884-1895. doi: 10.1111/ejn.14067. PMID: 30033547; PMCID: PMC6113083.

Diese Seite wurde am 12.03.2024 zuletzt aktualisiert.